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39 人阅读发布时间:2026-06-09 13:28
外泌体(Exosomes)是由细胞分泌的小型膜性囊泡(直径30-150 nm),内含RNA、蛋白质及脂质等生物活性分子,广泛存在于血液、唾液、尿液及乳汁等体液中。作为细胞间通讯的重要载体,外泌体通过传递其内含的效应分子或信号分子,在免疫调节、肿瘤转移、组织修复等生理病理过程中发挥关键作用。然而,传统超速离心法提取外泌体存在步骤繁琐、硬件门槛高、操作难度大的局限,而基于聚合物沉淀原理的专用试剂盒为细胞培养上清样本的外泌体提取提供了更高效的解决方案。

图:外泌体生物发生与结构特征
传统差速超速离心法被视为外泌体分离的"金标准",但其固有缺陷在细胞培养上清处理中尤为突出:
技术瓶颈:
相比之下,基于聚合物沉淀法的提取试剂盒通过改变溶液中分子的溶解度特性,使外泌体在低离心力(10,000×g左右)条件下即可沉淀,显著降低了对超高速离心设备的依赖。

图:不同外泌体提取方法对比(差速离心vs超速离心)
标准试剂盒通常包含两种关键组分:
这是一种经过优化的聚合物缓冲体系,通过改变外泌体在水溶液中的溶解度,促使纳米级囊泡从水相中析出。该溶液无核酸酶污染,可直接用于后续RNA分析。
用于去除杂质和浓缩外泌体颗粒,通过分子筛效应拦截外泌体同时允许小分子杂质透过,进一步提高外泌体纯度。
完整的提取流程分为三个阶段,严格遵循以下步骤可确保获得高纯度、完整的外泌体颗粒:
细胞培养上清样本的质量直接影响最终提取效果。建议起始样本量不低于20 mL,以确保足够的外泌体产量。
操作要点:

图:外泌体提取流程示意图
沉淀反应:
按一定比例(通常为4:1,即20 mL上清加入5 mL浓缩溶液)加入ECS试剂,通过涡旋震荡混匀1分钟,确保溶液充分混合。
静置孵育:
将混合液置于4°C冰箱静置8小时以上(不超过24小时)。此步骤是外泌体充分聚集沉淀的关键,延长静置时间可提高得率,但过长可能导致非特异性蛋白共沉淀。
离心收集:
4°C条件下10,000×g离心60分钟,弃去上清后保留管底沉淀(富含外泌体颗粒)。再次短暂离心(10,000×g,2分钟),尽可能吸尽残留上清液。
重悬处理:
使用适量1×PBS缓冲液(建议每20 mL原始上清使用200 μL PBS)吹打重悬沉淀物。操作需轻柔,避免剧烈震荡导致外泌体破裂。
纯化过滤:
将重悬液转移至纯化过滤器(EPF柱)中,4°C条件下3,000×g离心10分钟。收集柱管底部液体,即为纯化后的外泌体悬液。
保存建议:
将纯化后的外泌体按实验需求分装,保存于-80°C超低温冰箱,避免反复冻融影响外泌体完整性。
通过上述流程获得的外泌体具有完整的膜结构和生物活性,适用于多种分析平台:
Q1:细胞上清样本如何正确采集与保存?
新鲜收集的细胞培养上清应立即置于冰上,若不能立即处理,可短期保存于4°C(不超过24小时),长期保存需-80°C冻存。冻存样本解冻时应在25°C水浴中快速解冻,完全融化后立即置于冰上,避免反复冻融。
Q2:为何需要去除细胞碎片和杂质?
残留的细胞碎片和蛋白杂质会与外泌体共沉淀,干扰后续电镜观察和蛋白分析。充分的预处理可显著提高外泌体纯度,减少非特异性背景。
Q3:离心转速如何准确换算?
不同离心机的转子半径不同,需根据RCF(×g)值而非RPM(转速)来设置离心机。公式为:RCF = 1.118 × 10^-5 × r × (rpm)^2,其中r为有效离心半径(单位:cm)。
Q4:提取过程中如何避免外泌体损失?
Q5:如何评估提取外泌体的质量?
建议通过"金标准"三重验证:
通过标准化的操作流程和严格的质量控制,细胞上清外泌体提取试剂盒能够为研究者提供足够产量和纯度的外泌体样本,支撑从基础生物学机制到临床转化应用的多层次研究需求。

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